2026年 6 月 19日, 星期五
新闻

细胞培养

贴壁细胞的分瓶操作步骤

1.从细胞单层吸出培养基。2. 缓慢加入37’C 温浴的PBS 或不含血清的培养基,让培养基沿容器壁流下,注意不要滴在细胞上,以免冲掉附着不牢的细胞。3. 再吸出PBS 或培养基。4. 加入含0.25 %胰蛋白酶的PBS, 加入蜇以刚刚没过细胞为宜。5. 立即吸去胰蛋白酶,停留在细胞上的时间为10 ~ 30s(可以用不含血清的旧培养基多洗细胞几次 …

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细胞的支原体检测——扫描电子显微镜法

(一)原理 利用电子显微镜的超级放大功能, 直接观察培养细胞中支原体污染情况。 (二)材料与设备 待检测细胞, 0.05%胰蛋白酶/0.02%EDTA 、2.5%的戊二酸、1%饿酸、0.1mol/L磷酸缓冲溶液( pH7.4 ) ,扫描电镜及相关设备。 ( 三)操作步骤 1. 将待检测细胞传代至贴有盖玻片的培养皿中。2. 37°C , CO2 培养箱中培养2 …

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细胞计数的方法

细胞计数是生物学研究和临床实验中常用的技术,用于确定样本中细胞的数量。根据不同的研究需要,细胞计数的方法有很多种。常见的细胞计数方法包括: 1. 显微镜计数法 显微镜计数法是最传统也是最常见的细胞计数方法,通常结合血球计数板(如 Neubauer 血球计数板)进行使用。 步骤: 将细胞悬液稀释到合适浓度。 使用血球计数板,置于显微镜下观察。 根据规则计算视野 …

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荧光表达的细胞在冻存后72小时后再测荧光情况,可以吗?

荧光表达后的细胞可以在冻存后72小时再测荧光,但有几点需要注意: 细胞存活率:冻存和解冻过程可能会影响细胞的存活率和状态。确保细胞在解冻后恢复良好,具有正常的形态和活力。 荧光稳定性:荧光蛋白的稳定性可能会随时间或细胞状态的变化而有所改变。确保荧光信号在解冻后仍然足够强且稳定。 冻存条件:使用适当的冻存保护剂(如DMSO)并在-80°C或液氮中冻存,以尽量减 …

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大肠杆菌电转后,4度涂抹到培养基板子上会导致死亡吗?细菌电转后是不是比细胞还脆弱啊?

这个问题问得很实际,也很关键,特别是在做质粒转化实验的时候容易遇到。 回答一:大肠杆菌电转后,4℃下操作是否会导致死亡? 不会直接导致大面积死亡,但确实会影响转化效率。 电转后的大肠杆菌处于一种“受伤”的状态,细胞膜被电击短暂打破,虽然迅速恢复,但暂时很脆弱。 如果在电转后没有及时给予复苏(比如在SOC、LB等液体培养基中摇床复苏30–60分钟),就直接在低 …

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问:现在是将构建好的质粒电转入到自制的感受态细胞里,质粒有10000bp,是90μL感受态细胞中加3.5μ质粒。我之前有电转过6000多bp的质粒,过夜培养可以长菌的。但是这个10000bp的质粒过夜培养没有单菌落,延长培养时间后有个别单菌落,但是挑单菌落到LB中并不浑浊。这种情况我是应该调整一下电转程序还是改一下加入质粒的量呢?

以下是详细的优化建议: 优化质粒用量(首要调整): 问题: 你目前使用的是3.5µL质粒加入90µL感受态细胞。关键在于质粒的浓度(ng/µL),而不是体积。 3.5µL 对于90µL感受态细胞来说体积不小,如果质粒浓度较高,实际DNA量可能大大超过电转最优范围。 原理: 过量的DNA会导致电击时产生过多的热量和离子效应,严重降低转化效率,尤其对大质粒(&g …

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人胚眙肝细胞的培养

随着各型肝炎、肝硬化、肝癌等慢性肝病的发病率日益升高,体外培养的肝细胞也被广泛地用千肝病基础研究中。尽管细胞培养技术不断改进和成熟,国内外也先后建立了多株人肝癌细胞系,但体外分离和培养人正常肝细胞仍是非常有价值的研究材料。 (一)材料与设备 1. 设备与器材   超净工作台、离心机、CO2 培养箱、-70℃ 冰箱、-20℃冰箱。2. 无菌材料   大培养皿、 …

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细胞培养类型的分类:根据来源分类

根据来源分类 原代细胞分离于动物或植物的组织,经培养获得。细胞一旦分裂就成为有限传代细胞株,并且有可能变成无性增殖化细胞。把正常细胞来源的有限传代细胞株持续传代,筛选出快速生长的细胞,就有可能把有限传代细胞祩转变成持续传代的细胞株,这个操作就是自然转化。   来源   与组织相溶性 维护 加倍 原代细胞 动物组织、胚胎或成体 典型 难 0 …

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培养基中pH 的调节

大多数细胞系增殖的最适pH 为7. 4, 当培养液逐渐变酸或变碱时,细胞的活力和增殖率将呈下降趋势。培养液必须缓冲细胞代谢葡萄糖和谷氨酰胺所产生的CO2 及乳酸。人们曾一度用碳酸氢盐、HCO3–与空气中CO2 共同构成一个缓冲体系,碳酸氢盐的低pka(pka=6. 1) 在pH7. 4 左右产生微弱的缓冲效能。无毒缓冲剂,如PIPES(pka=6 …

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