2026年 7 月 5日, 星期日
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英格恩生物

英格恩生物(Engreen)专注转染技术18年,自主研发 Entranster® 系列转染试剂,提供 DNA、RNA、病毒(慢病毒/腺病毒/AAV)及动物体内(in vivo)转染整体解决方案,大量高分 SCI 文献采用。本博客由英格恩技术团队维护,分享转染及分子/细胞生物学实验方法、常见问题与文献解读。官网:www.engreen.com.cn。

DNA 样品的酚抽提

酚抽提通常用来对DNA 或RNA 样品进行蛋白质的去除。酚与水不互溶,当它们混合时会形成两相,水相和酚相。当含有DNA 的水溶液与酚混合时,蛋白质会进入酚相,再将含DNA 的水相取出进行再抽提和乙醇沉淀浓缩。 一、材料 抗有机溶剂的塑料管,尝试尽可能小的体积,大多数的抽提可以在微量离心管中进行。 TE 饱和的酚:氯仿:异戊醇(25 : 24:1) 氯仿:异戊 …

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碱-SDS 质粒小量制备

小量制备可以从细菌培养物中抽提和分析,离心机12 或16 管足够一次制备。 一、材料 5 ml 过夜培养细菌培养物。使用LB培养基加入合适的抗生素培养单克隆菌体,37’C 振荡培养 灭菌的微桩离心管 冰 溶液I (裂解缓冲液, 25 mmol/L Tr的HCI pH8.0, 50 mmol/L葡萄糖, 10 mmol/LEDTA) ,冰上预冷 溶 …

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DNA分离前你应该知道的那些事

DNA 是相当稳定的。这也是保存和传递遗传信息所必须具备的但是不能因此而太随意,DNA的污染来源主要是其他DNA 。 DNA 分离 分离的DNA可以是基因组的也可以是染色体组外的。 研究DNA 分离试剂盒,这些试剂盒可以是针对基因组的和染色体组外的DNA、从琼脂糖凝胶中分离DNA或者从PCR产物中抽提DNA。他们利用一些结合DNA的树脂或者滤膜,通常是一些小 …

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细胞污染的常见类型及预防措施

一、支原体污染 识别支原体污染。这是一种很难发现却经常存在的问题。支原体是最小的(0. 3μ.m)能够自我复制的有机体,倒置显微镜下通常观察不到。支原体没有细胞壁,对常用的抗生素不敏感。支原体感染是极为不易察觉的,可能直到出现了可以观察到的病变或发现细胞正常功能丧失的时候,才意识到是发生了支原体感染。 不采用特殊的染色方法,也没有观察到病变但是实验总是不成功 …

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如何判断细胞是否被污染?

发生污染,既耽误时间又是一个灾难,熟练的无菌操作能避免许多问题,但早期检测污染是一种可以预警的方法。对于培养箱中的每瓶细胞都要注意观察,要养成习惯,每次打开培养箱时,迅速看看有没有发生污染。 细菌、酵母、真菌、霉菌、支原体以及其他的培养细胞都可能引起污染。 怎样识别污染 一、肉眼观察,把培养瓶或培养皿拿起来,对着光线检查。 浑浊情况。即使细胞密度很高,培养基 …

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细胞的冷冻和储存

细胞生长时的表型会发生改变或漂变,所以细胞必须计数,计数后应马上冻存。 冷冻细胞前 检查冷冻细胞所需试剂和器具是否备齐。 确认有无菌的可用于冷冻的冻存管 。 确认液氮罐里是否有冻存细胞的位置。 冷冻细胞 将培养基中的细胞培养至对数生长期。 进行活细胞计数,不要冻存死细胞比例高达20%以上的细胞。 决定冻存量,安排需要几个冻存管。 冻存细胞在融化时要稀释10 …

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活细胞的显微计数方法及步骤

将细胞样品与台盼蓝染料混合。活细胞排斥染料,而死细胞被染成深蓝色。将细胞铺在血球计数器的玻板上,显微镜下进行人工计数。 一、材料 血(球)计数计(改进的Neubauer 型),每次用后洗净并晾干。(也可以用其他计数器,只是格子不同。) 血(球)计数计的盖玻片(可重复使用),每次用后洗净并晾干。 含0.4% (W/V) 台盼蓝的PBS 。 计数器 悬浮好的细胞 …

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Western-Blot中BSA,脱脂蛋白的作用是什么?

经常有人做Western-Blot会疑惑:为什么做蛋白实验,应该把杂蛋白去除才对,会担心其他蛋白的加入会影响实验结果,增加背景。但为什么偏偏会用加入BSA,脱脂蛋白的方法减少背景呢? 这需要从Western-Blot的原理说起,Western-Blot中电泳转膜后让蛋白分布NC膜或PVDF膜上,但膜上还有很多地方是空白的,这些空白的地方如果不被封闭,很可能就 …

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悬浮细胞的分瓶操作步骤

悬浮细胞的分瓶 轻轻的摇匀培养瓶中的细胞培养物,吸出1 ml 到微量离心管中。 对细胞进行计数,同时观察细胞状态。 计算出稀释倍数,决定种子液的量。 吸出适量的细胞到新的培养瓶中。 加入适量的37°C 预热的新培养基。 把细胞放入培养箱,并把盖子松开。 继续培养母液培养物,不加入新的培养基。注意每次传代后都要保留原液作为备份,以防传代后的细胞被污染。在培养瓶 …

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贴壁细胞的分瓶操作步骤

1.从细胞单层吸出培养基。2. 缓慢加入37’C 温浴的PBS 或不含血清的培养基,让培养基沿容器壁流下,注意不要滴在细胞上,以免冲掉附着不牢的细胞。3. 再吸出PBS 或培养基。4. 加入含0.25 %胰蛋白酶的PBS, 加入蜇以刚刚没过细胞为宜。5. 立即吸去胰蛋白酶,停留在细胞上的时间为10 ~ 30s(可以用不含血清的旧培养基多洗细胞几次 …

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