要想做好细胞的电转染实验,应注意以下几点: 1. 选择合适的电场强度 合适的电场强度对于电转染实验非常重要,电场强度不能过高,过高会增加细胞的死亡率;也不能过低,过低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同细胞系具有不同的最佳场强值,实验前应测定所转染细胞系的最佳电场强度。 2. 选择合适的细胞 用于电转的细胞一般选取处于对数生长期的细胞(15代以内 …
阅读更多 »视神经星状胶质细胞的培养
随着细胞培养技术的不断改进,虽然正常细胞难于培养成活,科研人员还是不断研究各种正常细胞的培养方法。到目前为止,几乎体内各种组织细胞均可在体外成功培养。越来越多的研究工作可应用体外培养的正常细胞作为模型开展工作。神经胶质细胞的成功培养最早由Raff 等完成。视神经胶质细胞的培养开始于1990 年,先后有多个实验室培养成功。视神经胶质细胞参与眼部多种疾病的发生、 …
阅读更多 »如何长期维持你的细胞株?
给养 (给予新鲜的培养基) ,细胞生长过程中会消耗培养基中的某些必需因子,必须更换培养基。 分瓶 (传代、细胞数批减少),细胞数量不断增长,超出容器和培养基的负荷。(PS: 培养和传代是同时进行的,很难只进行一个而不进行另一个操作。) 冻存 细胞株都必须分装冻存样品。可以作为备用,防止细胞表型的漂变 …
阅读更多 »细胞的支原体检测——扫描电子显微镜法
(一)原理 利用电子显微镜的超级放大功能, 直接观察培养细胞中支原体污染情况。 (二)材料与设备 待检测细胞, 0.05%胰蛋白酶/0.02%EDTA 、2.5%的戊二酸、1%饿酸、0.1mol/L磷酸缓冲溶液( pH7.4 ) ,扫描电镜及相关设备。 ( 三)操作步骤 1. 将待检测细胞传代至贴有盖玻片的培养皿中。2. 37°C , CO2 培养箱中培养2 …
阅读更多 »浅析细胞转染效率低下的原因
影响细胞转染效率低下的原因主要有: 1、细胞太少或细胞密度太大 细胞密度对转染效率有一定的影响。不同的转染试剂,要求转染时的最适细胞密度各不相同,即使同一种试剂,也会因不同的细胞类型或应用而异。转染时过高或者过低的细胞密度会导致转染效率降低,乃至表达水平偏低。因此如果选用新的细胞系或者新的转染试剂,最好能够进行优化实验并为以后的实验建立一个稳定方法,包括适当 …
阅读更多 »细胞污染的常见类型及预防措施
一、支原体污染 识别支原体污染。这是一种很难发现却经常存在的问题。支原体是最小的(0. 3μ.m)能够自我复制的有机体,倒置显微镜下通常观察不到。支原体没有细胞壁,对常用的抗生素不敏感。支原体感染是极为不易察觉的,可能直到出现了可以观察到的病变或发现细胞正常功能丧失的时候,才意识到是发生了支原体感染。 不采用特殊的染色方法,也没有观察到病变但是实验总是不成功 …
阅读更多 »贴壁细胞的分瓶操作步骤
1.从细胞单层吸出培养基。2. 缓慢加入37’C 温浴的PBS 或不含血清的培养基,让培养基沿容器壁流下,注意不要滴在细胞上,以免冲掉附着不牢的细胞。3. 再吸出PBS 或培养基。4. 加入含0.25 %胰蛋白酶的PBS, 加入蜇以刚刚没过细胞为宜。5. 立即吸去胰蛋白酶,停留在细胞上的时间为10 ~ 30s(可以用不含血清的旧培养基多洗细胞几次 …
阅读更多 »慢病毒感染后多长时间换液和多长时间检测?
在慢病毒感染的实验中,通常的做法是,在感染后24小时更换培养液,目的是去除未吸附的病毒和残留的病毒介质,避免对细胞的毒性影响。更换培养液后,细胞会继续培养,通常会保持培养在常规的全培液中。 对于延长观察时间的问题,感染后72小时一般是观察慢病毒感染效果的一个标准时间点,因为大多数慢病毒的转导效率在72小时内达到峰值。尽管感染后24小时更换培养液,但并不意味着 …
阅读更多 »慢病毒感染,胶体金测出来很高,可感染效果很差的原因
慢病毒感染效率低,尽管用胶体金测试显示滴度很高,可能有以下几个原因: 病毒颗粒质量:虽然胶体金检测显示病毒滴度很高,但这并不意味着所有的病毒颗粒都是功能性的。有可能病毒颗粒已经失活或者结构受损,无法有效感染目标细胞。 病毒浓度与效价的差异:胶体金检测主要测量病毒颗粒的数量,但这些颗粒不一定都具有感染性。有效感染的病毒颗粒(感染性单位)可能比实际检测的数量要低 …
阅读更多 »siRNA细胞转染过程中常见问题及解答
问:siRNA导入细胞有哪些方法,哪种最好? 答:siRNA导入细胞有以下几种方法:化学转染技术、电穿孔法、磷酸钙共沉淀技术、显微注射和载体导入技术。选择时应该依据实验条件考虑以下因素:细胞对转入方式的承受能力、细胞对病毒侵染的易感性、细胞的生长特性等。对贴壁细胞来说化学转染技术是最为常用的方法,而对悬浮细胞则采用电穿孔法效果较好。 问:哪种转染试剂效果好? …
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