慢病毒感染后,细胞不生长可能有多种原因。 以下是一些常见的原因和解决方法: 1) 病毒滴度过高: 原因:高滴度的慢病毒可能导致细胞毒性,使细胞无法正常生长。 解决方法:降低病毒的滴度,进行一系列稀释实验,找到一个既能有效转染又不影响细胞生长的滴度。 2) 细胞状态不佳: 原因:感染前细胞的健康状态可能影响感染后的生长。 解决方法:确保细胞在最佳状态下进行感染 …
阅读更多 »如何解决病毒感染细胞效率低的难题?
病毒感染细胞本来效率就较低,一定要注意以下几点:1.感染时的培养基尽量少些;2. 使用Envirus-LV,可以提高效率约20-50倍。 病毒感染细胞本来效率就较低,整个过程相对复杂难操作,一般一次花费周期至少两三个月,多则几个月到十几个月不等,经费也是几万到十几万。万一实验失败需要重复操作会花费更多的时间和开支。所以有效提高病毒转染 …
阅读更多 »siRNA转染实验的几点建议
为了达到高的转染效率,在转染实验过程中,需要注意以下几点: 1.纯化siRNA siRNA的浓度和纯度对转染实验非常重要。为得到高纯度的siRNA,推荐用玻璃纤维结合,洗脱或通过15-20%丙烯酰胺胶除去反应中多余的核苷酸,小的寡核苷酸,蛋白和盐离子。注意:化学合成的RNA通常需要跑胶电泳纯化(即PAGE胶纯化)。 2.避免RNA酶污染 微量的RNA酶将导致 …
阅读更多 »慢病毒感染,铺板后24小时感染,病毒量是不是按铺板时细胞数的二倍计算的?
一般来说,慢病毒感染时,病毒量的计算主要依据目标MOI(Multiplicity of Infection)以及当前的细胞数量。铺板后24小时的细胞数量可能会有所增加,具体情况取决于细胞的增殖速度。 如果在铺板24小时后进行感染,通常需要考虑细胞的增殖情况来调整病毒量。如果您的细胞在这段时间内大约增殖了一倍,那么可以按铺板时细胞数的两倍来计算所需病毒量,以确 …
阅读更多 »慢病毒载体的滴定
一、试剂 完全培养基、DMEM 培养基、胎牛血清(FBS)、慢病毒载体储备液、多聚甲酸( 4%) ( 可选;见步骤15)、青霉素/慢病毒滴定试剂盒链霉素溶液( P/S ) (100 ×)、磷酸盐缓冲盐水( PBS )、聚凝胺(海美溴铵) ( 8mg/mL) 、QuickTiter (慢病毒相关的HIV p24 )、293T 细胞、胰蛋白酶-EDTA ( 0. …
阅读更多 »怎样能够提高细胞转染实验效率?
1.选择合适的转染试剂 不同细胞系转染效率通常不同,但细胞系的选择通常是根据实验的需要,因此在转染实验前应根据实验要求和细胞特性选择适合的转染试剂。每种转染试剂都会提供一些已经成功转染的细胞株列表和文献,通过这些资料可选择最适合实验设计的转染试剂。当然,最适合的是高效、低毒、方便、廉价的转染试剂。如英格恩的 …
阅读更多 »细胞DNA转染实验影响因素
1.细胞密度 一般来说,当细胞密度达到60%~80%时进行转染可以取得较高的转染效率,过低或过高都会影响转染效果。 2.细胞状态 这点非常关键,很多时候传代次数太少或者太多都将导致细胞对转染试剂敏感度的改变。因此,为了提高转染效率以及转染稳定性、降低细胞毒性,应尽量使用适度传代的细胞系,并在不同次实验时保持细胞传代次数的一致性。 还有,尽量选择无 …
阅读更多 »DEAE-葡聚糖介导的转染:高效率的转染方法
DEAE -葡聚糖介导的转染与磷酸钙共沉淀介导的转染在三个方面有重要的不同。第一,该方法用于克隆基因的瞬时表达,而不是细胞的稳定转化(Gluzman 1981 ) 。第二,该方法对BSC-1 、CV- 1 和COS 等细胞系非常有效,但对许多其他类型的细胞转染效果不理想。第三, DEAE-葡聚糖转染的DNA 用量比磷酸钙共沉淀转染少。采用0.1 ~ 1.0μ …
阅读更多 »细胞培养类型的分类:根据来源分类
根据来源分类 原代细胞分离于动物或植物的组织,经培养获得。细胞一旦分裂就成为有限传代细胞株,并且有可能变成无性增殖化细胞。把正常细胞来源的有限传代细胞株持续传代,筛选出快速生长的细胞,就有可能把有限传代细胞祩转变成持续传代的细胞株,这个操作就是自然转化。 来源 与组织相溶性 维护 加倍 原代细胞 动物组织、胚胎或成体 典型 难 0 …
阅读更多 »30个关于CCK-8的Q&A
Q1: 一个孔中应接种多少个细胞? A1: 当使用标准96孔板时,贴壁细胞的最小接种量至少为1,000 个/孔 (100μl 培养基)。检测白细胞时的灵敏度相对较低,因此推荐接种量不低于2,500 个/孔 (100μl 培养基)。如果要使用24孔板或6孔板实验,请先计算每孔相应的接种量,并按照每孔培养基总体积的10%加入CCK-8溶液。 Q2: 能否用3 …
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英格恩生物技术博客 生物实验干货分享