2026年 9 月 18日, 星期五
新闻

病毒感染

嘌呤霉素筛选标记的病毒滴定 Protocol

关于使用嘌呤霉素筛选标记的慢病毒或逆转录病毒进行病毒滴定的 protocol,整理了一个常用且较为权威适用于慢病毒系统: 【嘌呤霉素筛选法的病毒滴定 Protocol】 原理简述: 将病毒感染宿主细胞,使用嘌呤霉素筛选,仅有成功整合了抗性基因的细胞能存活。最后通过计数存活细胞(克隆或整体密度)来估算病毒滴度。 实验材料: 病毒上清; HEK293T 或其他易 …

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293T分别包装两种病毒,浓缩后混合感染鼠CD8+ T细胞可以吗?

原则上可以,具体要看以下几个条件: 步骤可行性: 分别包装:在293T细胞中分别转染两种构建(比如psPAX2 + pMD2.G + 各自的载体),收集病毒上清; 浓缩:超速离心或PEG浓缩,两种病毒分别处理; 混合感染:感染前混合两种浓缩后的病毒,用于感染小鼠CD8+ T细胞。 技术要点: T细胞激活:CD8+ T细胞对逆转录病毒天然不易感染,通常需要先用 …

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慢病毒转染贴壁细胞实验方法

1.提前一天细胞铺板 提前一天种植细胞,以感染时细胞融合度在50%左右为宜(悬浮细胞根据需要调整,不要采用过高的细胞密度)。 感染实验 ⑴将EnvirusTM-LV用无血清稀释液稀释(用量参见下表),充分混匀,制成增强剂稀释液。 ⑵将病毒浓缩液用无血清稀释液稀释(用量参见下表),充分混匀,制成病毒稀释液。 注:由于病毒浓度情况不同,具体病毒浓缩液用量酌情依据 …

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慢病毒倍比稀释测定活性的实验中,DAY2天时,把稀释好的病毒和细胞孵育过夜时,用把细胞原培养基吸取出去吗,还是直接把病毒液添加进去?

好问题!在进行 慢病毒倍比稀释测定病毒滴度(titer) 的时候,DAY2 加入病毒时是否更换培养基,确实是一个关键点,对感染效率有一定影响。下面是两种常见操作方式,以及推荐做法: 推荐操作:先吸掉培养基,再加病毒(常规做法) 流程简述(以DAY2为节点): DAY1:铺板细胞(如293T、HEK293,常用于测滴度); DAY2:感染操作 吸掉旧培养基; …

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慢病毒感染后,细胞不生长原因?

慢病毒感染后,细胞不生长可能有多种原因。 以下是一些常见的原因和解决方法: 1) 病毒滴度过高: 原因:高滴度的慢病毒可能导致细胞毒性,使细胞无法正常生长。 解决方法:降低病毒的滴度,进行一系列稀释实验,找到一个既能有效转染又不影响细胞生长的滴度。 2) 细胞状态不佳: 原因:感染前细胞的健康状态可能影响感染后的生长。 解决方法:确保细胞在最佳状态下进行感染 …

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慢病毒感染后多长时间换液和多长时间检测?

在慢病毒感染的实验中,通常的做法是,在感染后24小时更换培养液,目的是去除未吸附的病毒和残留的病毒介质,避免对细胞的毒性影响。更换培养液后,细胞会继续培养,通常会保持培养在常规的全培液中。 对于延长观察时间的问题,感染后72小时一般是观察慢病毒感染效果的一个标准时间点,因为大多数慢病毒的转导效率在72小时内达到峰值。尽管感染后24小时更换培养液,但并不意味着 …

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