英格恩生物技术博客 生物实验干货分享
原则上可以，具体要看以下几个条件： 步骤可行性： 分别包装：在293T细胞中分别转染两种构建（比如psPAX2 + pMD2.G + 各自的载体），收集病毒上清； 浓缩：超速离心或PEG浓缩，两种病毒分别处理； 混合感染：感染前混合两种浓缩后的病毒，用于感染小鼠CD8+ T细胞。 技术要点： T细胞激活：CD8+ T细胞对逆转录病毒天然不易感染，通常需要先用 …
阅读更多 »AAV病毒感染，tu/ml和vg/ml 的单位如何 换算
在AAV病毒感染实验中，TU/mL（转导单位每毫升，Transduction Unit per milliliter）和vg/mL（病毒基因组拷贝数每毫升，Viral Genome copy per milliliter）是两种常见的病毒滴度单位。它们表示的是病毒浓度的不同方面： TU/mL：代表的是真正具有转导能力的AAV颗粒的数量，也就是能够在宿主细胞中 …
阅读更多 »测定病毒滴度，是否可直接使用 293 细胞?
测定病毒滴度时，是否可以直接使用 HEK293 细胞，取决于你使用的病毒类型和实验目的。 一般来说： 如果是腺病毒或慢病毒，HEK293 细胞（特别是 HEK293T 细胞）通常是不错的选择，因为它们表达病毒包装过程中需要的辅助因子（如腺病毒的 E1A/E1B 或慢病毒的 VSV-G），可以有效地被感染并产生明显的病毒效应。因此，很多实验室会用 293 细胞 …
阅读更多 »慢病毒感染后，细胞不生长原因？
慢病毒感染后，细胞不生长可能有多种原因。 以下是一些常见的原因和解决方法： 1) 病毒滴度过高: 原因：高滴度的慢病毒可能导致细胞毒性，使细胞无法正常生长。 解决方法：降低病毒的滴度，进行一系列稀释实验，找到一个既能有效转染又不影响细胞生长的滴度。 2) 细胞状态不佳： 原因：感染前细胞的健康状态可能影响感染后的生长。 解决方法：确保细胞在最佳状态下进行感染 …
阅读更多 »过表达间充质干细胞的膜蛋白，但是慢病毒感染后，长很慢，并且传代后死很多，怎么办呢?（加完慢病毒24h后我是用20%血清去养的）
间充质干细胞（MSCs）本身就对外界刺激比较敏感，而表达的又是膜蛋白，这通常比表达胞质蛋白（如 GFP）更具细胞毒性。这种情况确实挺让人头大的。 膜蛋白在合成后需要经过内质网和高尔基体的复杂加工、折叠并转运至细胞膜。过表达膜蛋白往往会给细胞的分泌通路造成巨大的生化负担（ER Stress），甚至改变膜的通透性或信号转导，导致细胞生长停滞或凋亡。 针对你的情况 …
阅读更多 »慢病毒感染后多长时间换液和多长时间检测?
在慢病毒感染的实验中，通常的做法是，在感染后24小时更换培养液，目的是去除未吸附的病毒和残留的病毒介质，避免对细胞的毒性影响。更换培养液后，细胞会继续培养，通常会保持培养在常规的全培液中。 对于延长观察时间的问题，感染后72小时一般是观察慢病毒感染效果的一个标准时间点，因为大多数慢病毒的转导效率在72小时内达到峰值。尽管感染后24小时更换培养液，但并不意味着 …
阅读更多 »慢病毒倍比稀释测定活性的实验中，DAY2天时，把稀释好的病毒和细胞孵育过夜时，用把细胞原培养基吸取出去吗，还是直接把病毒液添加进去？
好问题！在进行 慢病毒倍比稀释测定病毒滴度（titer） 的时候，DAY2 加入病毒时是否更换培养基，确实是一个关键点，对感染效率有一定影响。下面是两种常见操作方式，以及推荐做法： 推荐操作：先吸掉培养基，再加病毒（常规做法） 流程简述（以DAY2为节点）： DAY1：铺板细胞（如293T、HEK293，常用于测滴度）； DAY2：感染操作 吸掉旧培养基； …
阅读更多 »慢病毒滴度的计算
实验准备 目标细胞：选择适合慢病毒感染的细胞株（如 HEK293T 或靶细胞）。 病毒稀释：对病毒原液进行一系列梯度稀释（如 10−1，10−2，10−3，10−4）。 感染细胞：将稀释后的病毒感染到目标细胞中，确保设置对照组（未加病毒）。 培养：培养 48-72 小时（根据病毒系统和荧光/抗性蛋白表达时间调整）。 检测方法：检测报告基因表达水平（如荧光蛋白 …
阅读更多 »逆转录病毒可以共感染吗？
可以。逆转录病毒（如MLV、lentivirus等）可以共感染同一细胞，尤其是不同病毒包装不同的转基因载体时，可以实现共转导（co-transduction），从而使同一细胞获得多个基因。 但要注意： 病毒滴度足够高：每个病毒的MOI（Multiplicity of Infection）需要合适，才有可能让同一细胞被两种病毒都感染。 标记或选择机制清晰：常用 …
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