2026年 7 月 5日, 星期日
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英格恩生物

英格恩生物(Engreen)专注转染技术18年,自主研发 Entranster® 系列转染试剂,提供 DNA、RNA、病毒(慢病毒/腺病毒/AAV)及动物体内(in vivo)转染整体解决方案,大量高分 SCI 文献采用。本博客由英格恩技术团队维护,分享转染及分子/细胞生物学实验方法、常见问题与文献解读。官网:www.engreen.com.cn。

用伯乐电转仪器,电转CHO-K1 , 密度1*10^7次方,方波,0.4口径杯子,300v电压,950毫安电阻率,20ms脉冲,加入20ug质粒,2天后细胞存活率是95%,最后电转染效率只达到30%,问如何提高转染效率?还有个问题,他根据文献资料在电转前,是把杯子和细胞在低温下冰浴,但是说明书说恢复到室温再电转,问是因为这个原因导致效率低吗?

下面把你给的条件先“翻译”成关键参数,方便对症下药: 细胞:CHO-K1,约 1×10^7 cells/mL; 杯子:0.4 cm 间隙; 脉冲:方波,300 V,20 ms,1 次脉冲(相当于 750 V/cm); DNA:20 μg 质粒; 结果:存活率 95%,转染效率 30%; 另外:细胞和电转杯在冰上,未回温到室温就电转。 一、效率偏低的主要可疑点 …

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分步转染,先电转GFP-mRNA,表达很好,然后第二天电转了一个红色荧光DNA质粒,第三天观察的时候只看到了少数细胞有红色荧光,看不到绿色荧光了,这是怎么回事呀?按说GFP已经表达了,怎么还能消失了呢

根据你的描述,GFP在第一天有很好的表达,但在第二天转染DNA质粒后,第三天绿色荧光消失,只有少数细胞有红色荧光。这可能涉及到几个不同的因素: 1. DNA质粒表达对GFP表达的抑制 高浓度DNA引起的翻译抑制:你已经电转过mRNA,然后再转DNA质粒,这可能引发细胞对大分子DNA的免疫反应,比如激活干扰素反应。这可能抑制了翻译,不仅影响红色荧光蛋白(DNA …

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请问一下,转染带荧光标记的NC,转染后需要拍照看转染效率,在转染后4-6小时换液吗?

一般原则: 1.转染试剂对细胞有毒性。因此通常会建议在 4–6小时后更换新鲜培养基,以减轻毒性,保证细胞状态。 2.换液是否影响转染效率? 针对你要拍荧光观察转染效率的情况: 如果只是想观察转染效率,一般建议 不要太早换液,至少等到荧光信号开始显现(通常24–48小时)再拍照。 如果细胞状态不好(明显发黄、漂浮、死亡增加),建议在 4–6小时换液,以保证细胞 …

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lonza电转,同时电转DNA和RNA,其中RNA的转染效率降低很多,单独RNA,效率很高;共转的时候,RNA的总量是一样的,一个GFP的mRNA,所以可以通过荧光判断表达量,但是当加入DNA后,GFP的荧光就非常差了,用的程序是适用于mRNA的一个程序,有什么建议吗

单独电转mRNA(GFP)信号很好,但一旦同时把DNA一起电转,GFP荧光显著下降。这个往往不是“挤占表达资源”这么简单,更多是由“电转参数 + 细胞先天免疫反应 + 总核酸/盐负载”三方面共同导致。给你一个可操作、优先级排序的排障与优化清单(不需要额外设备就能尝试): 先做两件最快见效的事 把DNA量往下砍 10–100×(起始试 10 ng~100 ng …

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做慢病毒滴度测定实验,请问是所有的都用293t细胞来做,还是说我要在别的细胞上做稳转株,我用别的细胞去摸病毒滴度就可以呀?

核心原则 标准物理滴度测定:强烈推荐使用293T细胞。 功能性滴度测定/特定应用验证:使用你的目标细胞。 详细解释 为什么推荐293T细胞测定物理滴度? 高易感性: 293T细胞对慢病毒感染非常敏感,因为它们高表达慢病毒进入所需的受体(如LDL受体)。 高转导效率: 它们通常能达到非常高的转导效率(>80%甚至90%+),这使得检测阳性细胞、计算滴度变 …

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