2022年 1月 28日, 星期五
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细胞的支原体检测——PCR 法

PCR 法是20 世纪80 年代中期建立起来的一种体外DNA 扩增实验,其基本原理是酶促DNA 合成反应,即在DNA 模板、引物和脱氧核糖核酸存在下,经DNA 聚合酶的作用,使DNA 链扩增延伸。该实验具有灵敏度高、特异性强、检测快速的特点,但其对实验环境要求严格, 实验成本较高, 有时还会出现假阳性的现象。

(一)材料与设备

支原体PCR 检测试剂盒、dNTP 、TaqDNA 聚合酶、缓冲溶液、琼脂糖、矿物油、超净工作台、PCR 仪、电泳仪、凝胶成像分析系统、台式离心机、旋涡混旋器等。

(二)操作步骤

1 样品的收集。待测细胞用无双抗培养液培养7d,用无菌容器取上清液500μl ,4℃ 保存待测。
2 . 模板的制作。在无菌的条件下, 取细胞培养上清1 00μl 于一无菌的0.5ml塑料离心管内,盖好盖子, 95 ℃ 水浴加热5min 。
3. 打开盖子,向管内加StrataClean Resin 10μl,盖好盖子,旋涡混悬器混合,离心5~ 10s, 吸取上清至一新的塑料离心管中,模板制作完毕, 4℃ 保存。
4. PCR 反应。反应体系的最适条件为10mmol/L Tris-HCI (pH 8.38), 50 mmol/L KCI, 1.5~ 2.5 mmol/L MgCl2,200 μmol/L dNTP, 2U Taq DNA 聚合酶,总反应体系为50μl , 反应用去离子水均需用紫外灯照射。
(1)在0.5ml 塑料离心管中加入35.2μl 去离子水及5μl 10 xTaq 反应缓冲溶液。
(2)依次加入下列成分: 0.4μl dNTP (25mmol/L)、0.4μl Taq 酶(5U/μl ) 、2μl引物。
(3) 加2μl 去离子水, 总体积45μl 。
(4)加5μl 己制成的模板到反应体系中。
(5) 阳性对照,内对照各5μl 加入到各自的反应体系中。
(6) 取1支含有以上反应体系的离心管,加入5μl 去离子水作为阴性对照管。
(7) 在反应体系中加入100μl 矿物油。
(8)PCR 程序见表1 。

程序 循环次数 温度(℃) 时间( min )
1 1 94 2
    50 2
    72 2
2 40 94 1
    50 1
    72 2

5.琼脂糖凝胶电泳。PCR 反应结束后,进行琼脂糖凝胶电泳,琼脂糖凝胶浓度为2%。电泳结束后,凝胶成像分析结果。

6.结果分析。该方法为检浏支原体的定性方法,在电泳泳道上, Marker、阳性对照、内对照均会出现不同的电泳条带, 当被检样品泳道出现明亮条带,且位置在阳性对照和内对照条带位置之间,即可认为该样品被支原体污染 。
有时还会发现一条泳道出现多条,可能是该样品感染2 种以上支原体所致。如果泳道内条带隐约出现,则可怀疑有支原体污染,重做该样品。

(三)注意事项

  1. PCR 反应的前期操作应在无菌环境中进行。
  2. 注意假阳性、假阴性,有时需多次重复。

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