2026年 3 月 15日, 星期日
新闻

病毒感染

过表达间充质干细胞的膜蛋白,但是慢病毒感染后,长很慢,并且传代后死很多,怎么办呢?(加完慢病毒24h后我是用20%血清去养的)

间充质干细胞(MSCs)本身就对外界刺激比较敏感,而表达的又是膜蛋白,这通常比表达胞质蛋白(如 GFP)更具细胞毒性。这种情况确实挺让人头大的。 膜蛋白在合成后需要经过内质网和高尔基体的复杂加工、折叠并转运至细胞膜。过表达膜蛋白往往会给细胞的分泌通路造成巨大的生化负担(ER Stress),甚至改变膜的通透性或信号转导,导致细胞生长停滞或凋亡。 针对你的情况 …

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慢病毒感染后,细胞不生长原因?

慢病毒感染后,细胞不生长可能有多种原因。 以下是一些常见的原因和解决方法: 1) 病毒滴度过高: 原因:高滴度的慢病毒可能导致细胞毒性,使细胞无法正常生长。 解决方法:降低病毒的滴度,进行一系列稀释实验,找到一个既能有效转染又不影响细胞生长的滴度。 2) 细胞状态不佳: 原因:感染前细胞的健康状态可能影响感染后的生长。 解决方法:确保细胞在最佳状态下进行感染 …

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逆转录病毒可以共感染吗?

可以。逆转录病毒(如MLV、lentivirus等)可以共感染同一细胞,尤其是不同病毒包装不同的转基因载体时,可以实现共转导(co-transduction),从而使同一细胞获得多个基因。 但要注意: 病毒滴度足够高:每个病毒的MOI(Multiplicity of Infection)需要合适,才有可能让同一细胞被两种病毒都感染。 标记或选择机制清晰:常用 …

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siRNA转染很有效(蛋白水平明显降低),将siRNA序列构建进慢病毒(shRNA形式)后感染细胞,荧光表达很强,但目标蛋白并未敲低,这是什么原因

你遇到的这个问题在慢病毒(lentivirus)介导的RNA干扰实验中其实挺常见,下面我们逐步分析下可能的原因: 实验现象简述: siRNA转染敲得很有效(蛋白水平明显降低); **将siRNA序列构建进慢病毒(shRNA形式)**后感染细胞; 荧光表达很强(说明病毒成功进入细胞,且有表达); 但目标蛋白并未敲低,几乎没有 knockdown 效果。 可能原 …

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使用带有GFP荧光标记的慢病毒感染细胞,想要检测GFP阳性率,通常用什么方法?

如果您使用的是带有GFP荧光标记的慢病毒感染细胞,想要检测GFP阳性率,通常情况下可以通过流式细胞仪来实现,步骤如下: 收集细胞:首先收集感染后的细胞,并用适当的缓冲液进行重悬。 去除死细胞:可以通过加PI(碘化丙啶)或7-AAD等染料来排除死细胞,这样有助于提高检测的准确性。 流式检测:使用流式细胞仪时,选择FITC通道(通常是FL1通道),因为GFP的荧 …

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293T分别包装两种病毒,浓缩后混合感染鼠CD8+ T细胞可以吗?

原则上可以,具体要看以下几个条件: 步骤可行性: 分别包装:在293T细胞中分别转染两种构建(比如psPAX2 + pMD2.G + 各自的载体),收集病毒上清; 浓缩:超速离心或PEG浓缩,两种病毒分别处理; 混合感染:感染前混合两种浓缩后的病毒,用于感染小鼠CD8+ T细胞。 技术要点: T细胞激活:CD8+ T细胞对逆转录病毒天然不易感染,通常需要先用 …

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