英格恩生物技术博客 生物实验干货分享
文献标题 《FGF21过表达通过调节SYK-NLRP3炎症小体-PPARγ-过氧化氢酶途径缓解糖尿病小鼠血管平滑肌细胞衰老》 FGF21 overexpression alleviates VSMC senescence in diabetic mice by modulating the SYK-NLRP3 inflammasome-PPARγ-catal …
阅读更多 »细胞电转染实验效率不理想的原因
1. 不合适的电场强度 合适的电场强度对于电转染实验非常重要，电场强度不能过高，过高会增加细胞的死亡率；也不能过低，过低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同细胞系具有不同的最佳场强值，实验前应测定所转染细胞系的最佳电场强度。 2. 细胞选择错误 用于电转的细胞一般选取处于对数生长期 …
阅读更多 »用伯乐电转仪器，电转CHO-K1 , 密度1*10^7次方，方波，0.4口径杯子，300v电压，950毫安电阻率，20ms脉冲，加入20ug质粒，2天后细胞存活率是95%，最后电转染效率只达到30%，问如何提高转染效率？还有个问题，他根据文献资料在电转前，是把杯子和细胞在低温下冰浴，但是说明书说恢复到室温再电转，问是因为这个原因导致效率低吗？
下面把你给的条件先“翻译”成关键参数，方便对症下药： 细胞：CHO-K1，约 1×10^7 cells/mL； 杯子：0.4 cm 间隙； 脉冲：方波，300 V，20 ms，1 次脉冲（相当于 750 V/cm）； DNA：20 μg 质粒； 结果：存活率 95%，转染效率 30%； 另外：细胞和电转杯在冰上，未回温到室温就电转。 一、效率偏低的主要可疑点 …
阅读更多 »怎样做好细胞电转染实验？
要想做好细胞的电转染实验，应注意以下几点： 1. 选择合适的电场强度 合适的电场强度对于电转染实验非常重要，电场强度不能过高，过高会增加细胞的死亡率；也不能过低，过低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同细胞系具有不同的最佳场强值，实验前应测定所转染细胞系的最佳电场强度。 2. 选择合适的细胞 用于电转的细胞 …
阅读更多 »电转染实验时，siRNA有什么要求？
使用Entranster-E试剂进行电转染实验时，要求使用纯度高、无菌且序列正确的siRNA。确定电转染的最佳siRNA浓度。尝试在250-750nM最终浓度范围内的siRNA浓度。Engreen建议导入一个非靶向或无意义的siRNA控制序列，以验证siRNA的基因特异性。此外，针对具有多个siRNA序列的基因可确保产生的表型不是由于脱靶效应所致 …
阅读更多 »电转染时，指数衰减脉冲形式的电转条件是什么？
对于engreen的Entranster-E电转染试剂，当使用0.4cm比色杯时，大多数细胞类型的指数衰减脉冲条件在200-300V的电压范围和800-1000μF的电容范围内。对于0.2 cm比色杯时，其范围分别为80-160 V和800-1000μF。对于使用0.4 cm比色杯的电穿孔实验，测试电压范围 …
阅读更多 »QBEmax：一种序列置换且内部保护的碱基编辑器（IF:33.1）
文献标题：QBEmax is a sequence-permuted and internally protected base editor 期刊：Nature Biotechnology 影响因子：33.1（2024年） 文献概要： 胞嘧啶碱基编辑器（CBE）显示出多重基因敲除应用的前景，但不纯的编辑、插入和脱靶仍然经常发生。我们在这里描述了QBEmax …
阅读更多 »电转效率受哪些因素影响？
电穿孔效率受以下几种因素的影响： 外加电场的强度。电压过低，培养细胞质膜的改变不足以允许DNA 通过； 电压过高，细胞会受到不可逆的损伤。对于大多数哺乳动物细胞系， 电压250~ 500V/cm时可达到最高瞬时表达水平。通常经过电穿孔， 20% ～ 50％的细胞能够存活（根据台盼蓝拒染法的检测结果） ( Patterson 1979; Baum et al. …
阅读更多 »质粒被酶切过还可以电转吗？
可以，但得分情况来看： 如果质粒是线性化了（即被酶切成线状DNA）： 可以电转，但是效率明显低于超级螺旋质粒（超螺旋 plasmid，通常是未切割、天然状态下的质粒结构）。 线性质粒在细胞内容易被核酸酶降解，稳定性和转化成功率比超螺旋质粒低很多。 有些时候，比如做基因组编辑（CRISPR knock-in）、整合型表达载体（需要基因组插入时），反而故意使用线 …
阅读更多 »大肠杆菌电转后，4度涂抹到培养基板子上会导致死亡吗？细菌电转后是不是比细胞还脆弱啊？
这个问题问得很实际，也很关键，特别是在做质粒转化实验的时候容易遇到。 回答一：大肠杆菌电转后，4℃下操作是否会导致死亡？ 不会直接导致大面积死亡，但确实会影响转化效率。 电转后的大肠杆菌处于一种“受伤”的状态，细胞膜被电击短暂打破，虽然迅速恢复，但暂时很脆弱。 如果在电转后没有及时给予复苏（比如在SOC、LB等液体培养基中摇床复苏30–60分钟），就直接在低 …
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