回答:“无抗的都长满”,说明细胞活性和数量没问题,基本排除培养条件问题。那么核心矛盾集中在质粒是否成功进入细胞并表达抗性基因。这里有几个关键排查点:质粒浓度是否足够(建议>100ng/μL)、抗性基因是否匹配(如氨苄不能用于表达AmpR的质粒)、抗性板浓度是否正确(过高会杀死阳性克隆)。
特别注意的是检查质粒纯度。实验室常用乙醇沉淀法提质粒,但残留的盐或乙醇会显著降低电转效率。建议用试剂盒纯化并测OD260/280,比值1.8-2.0最佳。另外电转杯的洁净度常被忽视,残留洗涤剂会电击时产生气泡导致短路。
“是否需要增加电转次数”,这其实有风险。反复电转会大幅降低细胞存活率,更推荐优化单次条件。如果所有参数都验证无误仍失败,可能是质粒自身问题,比如抗性基因突变,建议重新转化验证质粒功能。
最后温馨提醒:电转后复苏培养基的温度和成分很关键。冰浴细胞必须恢复至室温再电转,否则易产生电弧;复苏培养基加10-15%甘油或山梨醇能提高脆弱细胞的存活率。
原因分析:
1 现象:抗性板无菌落
原因:质粒未进入细胞
验证方法:质粒线性化验证/PCR检测
2现象:无抗板长满
原因: 细胞活性和数量正常,验证方法:显微镜观察形态
原因:抗性基因未表达/失效 验证方法:更换抗性板类型验证
原因:抗性浓度过高 验证方法:梯度稀释抗性板测试
总结:无需盲目增加电转次数(易导致细胞团灭),应优先排查:
- 质粒质量 → 2. 电转参数 → 3. 抗性系统 → 4. 细胞状态。
80%的问题可通过 更换新鲜抗性板 + 重新纯化质粒 + 校准电转参数 解决。
英格恩生物技术博客 生物实验干货分享